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    免疫組化原理、流程及結果分析

    發(fā)布時(shí)間: 2022-12-29  點(diǎn)擊次數: 1212次

    免疫組化原理、流程及結果分析

    免疫組化原理
    免疫組化染色是用一抗與被檢測組織中目的蛋白抗原結合,然后用HRP等標記的二抗與一抗進(jìn)行結合,最后通過(guò)與DAB顯色劑反應,進(jìn)而確認所要檢測蛋白抗原的定位、半定量等目的。
    免疫組化更多的意義在于查看目的蛋白的定位。定量一般用western來(lái)實(shí)現。

    免疫組化染色和HE染色的不同之處可能是HE染色比較粗略地辨認不同細胞形態(tài)學(xué)改變;而后者能夠針對特異性細胞標志物來(lái)檢測特異性細胞的改變(數量)、也可檢測細胞內細胞因子的轉位,組織中一些特異性蛋白的表達的量改變(通過(guò)圖像分析系統分析顏色深淺、分布的面積等綜合分析)。
    通俗的講,HE僅僅是看大體病理改變,比如組織壞死,比如炎性滲出。免疫組化,看你的目的蛋白的表達情況。

    免疫組化和HE染色的對比
    DAB和HE一樣也是一種染色劑,HE染色相對簡(jiǎn)單,能分辨出細胞中的嗜酸嗜堿性物質(zhì);DAB染色全稱(chēng)應該叫做免疫組化DAB染色,經(jīng)過(guò)一系列復雜的生化反應后,DAB(二氨基聯(lián)苯胺)染色劑能將辣根過(guò)氧化物酶染成棕色。

    常用的免疫組化染色方法:
    組化用HRP的話(huà),信號不夠強。通常用生物素標記HRP來(lái)增強信號。
    1、ABC法(卵白素-生物素-過(guò)氧化物酶復合物法)
    ABC法是利用卵白素與生物素*的高度親和力特性,與生物素化二抗結合,形成抗原+特異性抗體+生物素化二抗+卵白素+生物素+HRP復合物,最后DAB顯色。
    復合物配制:先將生物素與酶結合,形成生物素化HRP,以生物素化HRP與卵白素按一定比例混合,形成卵白素-生物素-過(guò)氧化物酶復合物。
    2、SP法(抗生物素蛋白鏈酶素-過(guò)氧化物酶復合物)
    本身沒(méi)有連接生物素,但有兩個(gè)生物素親和力ji高的結合位點(diǎn),可以與二抗上的生物素結合,敏感性高,復合物不需要使用前混合,更為簡(jiǎn)便。
    3、PAP法
    4、直接法

    樣本制備


    免疫組化結果分析
    免疫組化結果的判斷原則:
    1、必須設陽(yáng)性對照和陰性對照。
    2、 抗原表達必須在特定部位。
    3、 陰性結果不能視為抗原不表達。

    免疫組化染色實(shí)驗組與對照組結果分析表 

    從表可以看出只有6、7實(shí)驗結果有意義。1-5均因對照組的結果已否定Ab的特異性或IHC技術(shù)操作存在錯誤等而使實(shí)驗結果失去意義,必須重復實(shí)驗或換用Ab。

    染色失敗的幾種情況及原因:
    1、所染的全部切片均為陰性結果,包括陽(yáng)性對照在內。
    2、所有切片均呈陽(yáng)性反應。
    3、所有切片背景過(guò)深。
    4、陽(yáng)性對照染色良好,檢測的陽(yáng)性標本呈陰性反應。

    所有切片呈陽(yáng)性反應,其原因:
    1、切片在染色過(guò)程中抗體過(guò)濃,或干片了。
    2、緩沖液配置中未加氯化納和PH值不準確, 洗滌不徹di。
    3、使用已變色的呈色底物溶液,或呈色反 應時(shí)間過(guò)長(cháng)。
    4、抗體溫育的時(shí)間過(guò)長(cháng)。
    5、H2O2濃度過(guò)高,呈色速度過(guò)快且粘附劑太厚。

    所有切片背景過(guò)深,其原因:
    1、內源性過(guò)氧化酶沒(méi)有wan全阻斷。
    2、切片或涂片過(guò)厚。
    3、漂洗不夠。
    4、底物呈色反應過(guò)久。
    5、蛋白質(zhì)封閉不夠或所用血清溶血。
    6、使用全血清抗體稀釋不夠。

    陽(yáng)性對照染色良好,檢測的陽(yáng)性標本呈陰性反應。
    最常見(jiàn)的原因:標本固定和處理不當。

    注意事項:
    1、蘇木素復染時(shí)間需要摸索,尤其要考慮陽(yáng)性染色的位置。
    2、切片脫蠟和水化要充分;加反應液時(shí)要覆蓋組織充分;每次加液前甩干洗滌液,但又防止干片。
    3、以下原因可能導致片子著(zhù)色不均勻:
    ①脫蠟不充分??梢?0℃烤20min,立即放入新鮮的二甲苯中。
    ②水化不全。應經(jīng)常配制新鮮的梯度乙醇。
    ③抗體沒(méi)混勻。用移液器充分混勻一抗/二抗等試劑。④抗體孵育時(shí),切片放傾斜。
    ⑤抗體孵育后PBS沖洗不充分。
    ⑥制片厚薄不均勻等問(wèn)題。
    ⑦染片盒不平,切片傾斜。
    4、一抗的清洗:
    1、單獨沖洗,防止交叉反應造成污染。
    2、溫柔沖洗,防止切片的脫落,推薦用浸洗方式。
    3、沖洗的時(shí)間要足夠,才能徹di洗去 結合的物質(zhì)。
    5、PBS的PH和離子強度的使用:
    1、建議PH在7.4-7.6濃度是0.01 M。
    2、中性及弱鹼性條件(PH7-8)有利 于免疫復合物的形成,而酸性條件則有利于分解;低離子強度有利于免疫復合物的形成,而高離子強度則有利 于分解。
    6、拍照:
    1、有條件的話(huà)應該立即拍照,若不能及時(shí)拍照,也要封好片和用指甲油封固,保持避光和濕度。

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